Informație

10.3: Întrebări pre-laborator - Biologie

10.3: Întrebări pre-laborator - Biologie



We are searching data for your request:

Forums and discussions:
Manuals and reference books:
Data from registers:
Wait the end of the search in all databases.
Upon completion, a link will appear to access the found materials.

  1. Ce se înțelege prin „diluție în serie”?
  2. De ce ar fi important să cunoaștem numărul de bacterii dintr-o probă de alimente sau băuturi?
  3. Scrieți următoarele în notație științifică:
    1. 1:10
    2. 1:10,000
    3. 234 x 104
  4. Care este inversul lui 3,0 x 10-5?
  5. Ce metode ar putea supraestima numărul de celule dintr-o probă?
    1. Numărătoarea directă
    2. Numărul de plăci standard - Metoda de izolare a plăcii de răspândire

Numărătoarea directă

Microbii dintr-o probă pot fi numărați prin vizualizarea și numărarea lor printr-un microscop și utilizând o lamă specială numită cameră de numărare Petroff-Hausser. Celulele sanguine pot fi numărate în acest fel prin intermediul unui hemocitometru (vezi secțiunea de resurse). Un volum de probă cunoscut este plasat pe diapozitiv, iar diapozitivul are linii de grilă care marchează zone de volum cunoscut. Zonele marcate pot fi evaluate într-un anumit model. Celulele sunt numărate în fiecare zonă și astfel se poate calcula un număr total pentru eșantion.

Pe vremuri, lucram pentru o companie de sucuri din QC. Unul dintre testele pe OJ a fost numărarea contaminanților fungici și insectelor printr-o lamă Petroff-Hausser.

prof. Kelly Burke

Contoarele electronice de celule numără, de asemenea, celulele individuale, de obicei pe măsură ce trec pe lângă un laser (citometrie în flux). Ambele metode numără atât celulele vii, cât și cele moarte și eventual orice resturi din soluție. Nu veți efectua o numărare directă în acest laborator.

Numărul de plăci standard

Metoda de izolare a plăcii de împrăștiere

În SPC se dorește să se determine densitatea (numărul) bacteriilor dintr-o probă de bulion/specimen de bacterii cu densitate necunoscută (număr de celule/unitate de volum). S-ar putea preleva o mică probă din specimen, poate 1,0 ml sau 0,1 ml și s-ar putea răspândi pe o placă Petri pentru a număra coloniile rezultate (rețineți că fiecare colonie este dintr-o celulă sau unitate bacteriană). Cu toate acestea, majoritatea specimenelor, pe baza turbidității, ar putea avea milioane de bacterii per ml în probă. Dacă 1,0 ml s-ar plasa pe agar, numărul de bacterii ar fi atât de multe încât ar fi imposibil să numărăm sau chiar să discerneți coloniile individuale. Prin urmare, trebuie efectuate o serie de diluții cu specimenul pentru a obține o probă care va produce o placă pe care pot fi numărate coloniile.

Pentru a face acest lucru, un volum cunoscut este prelevat din proba originală și plasat într-un tub de diluție cu un volum cunoscut, de obicei din apă sterilă sau bulion. După amestecare, se ia un volum cunoscut din tubul de diluție și se pune într-un alt tub de diluție. Această serie de diluții poate fi repetată de mai multe ori, rezultând progresiv mai puține celule în fiecare tub pe linie.

Din amestecurile diluate se pot îndepărta apoi 1,0 ml sau 0,1 ml și se pot întinde pe o placă de mediu. Undeva în serie va fi o „placă numărabilă”. O placă numărabilă este cea care are între 30-300 CFU/ml (Colonie Forming Units/ml). Mai puțin de 30 de colonii (TFTC) și contorizarea greșită pe o placă devin problematice statistic. Mai mult de 300 de colonii (TNTC) și numărarea devine foarte dificilă, iar erorile sunt ușor de făcut! Veți vedea acest lucru atunci când vă placați mostrele.

Odată ce s-a numărat numărul de CFU pe o placă, acel număr trebuie înmulțit înapoi cu cantitatea în care proba a fost diluată - factorul de diluție. De exemplu, dacă vă diluați proba de 100 de ori (însemnând că proba pe care ați folosit-o a fost de 100 de ori mai diluată decât specimenul original), trebuie să vă înmulțiți numărul cu 100 pentru a determina densitatea bacteriilor din specimenul original. Există mai multe moduri de a calcula diluțiile în serie și diluțiile finale placate. Se poate face orice tip de diluare; cu toate acestea, într-un SPC diluțiile sunt de obicei 1:10 sau 1:100, care devin destul de ușor de calculat odată ce le exersați și obțineți modelele. Procesul este ilustrat în exemplele de mai jos.

Exemplu (PageIndex{1})

O singură diluție poate fi calculată după următoarele:

Cantitatea transferată + volumul tubului de diluție = DF (factor de diluție)

Dacă 1,0 ml este transferat într-un tub de diluție de 9,0 ml, atunci diluția este:

Care ar fi diluția dacă s-ar adăuga 0,1 ml la 9,9 ml? Arată cum ai determina asta.

Soluţie

O serie de diluții este cumulativă. Fiecare tub este mai diluat decât ultimul, astfel încât diluțiile sunt compuse (înmulțite împreună) pe măsură ce seria progresează:

Aceste diluții pot fi calculate și cu această ecuație utilizată în mod obișnuit:

[V_1D_1 = V_2D_2 unumber ]

unde V= volum; D= diluare

Să presupunem că ați transferat 10,0 ml din proba originală nediluată într-un tub de diluție de 90,0 ml. (V_1) este volumul pe care îl vei transfera (10,0 ml). (D_1) este întotdeauna 1 deoarece acesta este tubul de diluție de pornire. (V_2) este volumul total din următorul tub de diluție după ce ați transferat proba în acesta. Deci, în acest caz,

[egin{align*}
10,0mathit{ml} (1) &= 100,0mathit{ml} (D_2); ext {rezolvarea pentru } D_2
10.0mathit{ml}/100.0mathit{ml}&= D_2
1/10&= D_2 ext { sau}
10^{-1}& = D_2
end{align*} onnumber ]

Iată un exemplu mai neobișnuit. Transferați 3,0 ml într-un tub de diluție cu 10,0 ml (De ce? Pentru că se poate! Nu așa ar face în mod normal...)

[egin{align*}
3,0mathit{ml} (1) &= 10,0mathit{ml} (D_2); ext {rezolvarea pentru } D_2
3.0mathit{ml}/13.0mathit{ml}&= D_2
0,23&= D_2 ext { sau}
2,3 ime 10^{-1}& = D_2
end{align*} onnumber ]

Următorul pas este să vă placați proba. Din nou, de obicei, ați placa 1,0 ml sau 0,1 ml, în funcție de ceea ce ați putea avea nevoie pentru diluțiile finale. Afișați factorul de diluție (DF) pentru fiecare placă (valoarea finală de diluție pentru placă):

Pentru a determina numărul (densitatea celulară inițială) de bacterii din proba originală:

Număr de CFU:

OCD= Cantitate placată x factor de diluție

Dacă ați diluat o placă de 100x (1:100 sau (10^{-2})), transferați 1,0 ml pe o placă de agar, rezultând 65 de colonii pe placă:

65 este numărul de CFU

1,0 ml este cantitatea placată

(10^{-2}) este factorul de diluție

Asa de,

65 CFU

(1,0mathit{ml}lx 10^{-2} = 65 x 10^2 ext{CFU}/mathit{ml} = 6,5 x 10^3 ext{CFU}/mathit{ml} = ) densitatea bacteriilor din specimenul original.


Laboratorul de osmoză Exemplul 2

Introducere:
Energia cinetică, o sursă de energie stocată în celule, face ca moleculele să se ciocnească unele de altele și să se miște în direcții noi. Difuzia este rezultatul acestui contact. Difuzia este mișcarea aleatorie a moleculelor într-o zonă de concentrație mai mică dintr-o zonă de concentrație mai mare. Osmoza este un tip de difuzie. Aceasta este difuzia apei printr-o membrană permeabilă selectiv dintr-o regiune cu potențial de apă mai mare într-o regiune cu potențial de apă mai scăzut. Potențialul apei este măsura energiei libere a apei într-o soluție. Un sistem viu conține, de asemenea, un transport activ pentru a crea mișcarea particulelor, cum ar fi ionii, care se mișcă împotriva gradientului lor de concentrație. Sursa de energie ATP este folosită în timpul acestui proces pentru a muta particulele prin membrana celulară. Acest experiment are loc pentru a măsura difuzia moleculelor mici prin tubulatura de dializă. Acest tub acționează ca o membrană permeabilă selectiv, permițând moleculelor mai mari să treacă, dar încet. Dializa este mișcarea unei substanțe dizolvate printr-o membrană permeabilă selectiv.

Când cele două soluții de pe ambele părți ale membranei sunt egale și nu este detectată nicio mișcare netă, soluțiile sunt izotonice. Aceasta înseamnă că soluțiile au aceeași concentrație de substanțe dizolvate. Dacă două soluții diferă în concentrația de soluți pe care o are fiecare, cea cu mai multă soluție este hipertonică. Soluția care are mai puțin dizolvat este hipotonică.

Potențialul apei prezice mișcarea apei în sau în afara celulelor plantelor. Este prescurtat de litera greacă psi și are două componente: o componentă fizică a presiunii, potențialul de presiune, și efectele substanțelor dizolvate, potențialul de dizolvat. Apa se mișcă întotdeauna dintr-o zonă cu potențial de apă ridicat spre scăzut. Ecuația este potențialul de apă este egal cu suma potențialului de presiune și potențialul de dizolvat.

Într-o celulă vegetală, este necesară presiunea turgenței. Aceasta este o presiune disponibilă plantelor într-un mediu hipotonic. Presiunea turgenței conferă plantelor structura și rezistența. Atunci când o celulă vegetală se află într-o soluție izotonă, presiunea turgenței scade, provocând ofilirea structurii plantei. În soluțiile hipertonice, membrana plasmatică a plantelor se micșorează de peretele celular, o acțiune numită plasmoliză.

Ipoteză:
Difuzia și osmoza au loc între diferite soluții molare până când soluțiile sunt izotonice, efectuând presiunea turgenței celulelor plantelor.

Materiale:
Laboratorul 1A – Materialele utilizate în realizarea acestui experiment sunt următoarele: o bandă de 30 cm de tub de dializă (preînmuiat), apă distilată, soluție 15% glucoză/1% amidon, pahar de 250 ml, soluție de iod iodură de potasiu, Testape de glucoză și sfoară.

Laboratorul 1B – Materialele utilizate în realizarea acestui experiment sunt următoarele: șase benzi preînmuiate de tuburi de dializă, apă distilată, soluții de zaharoză 0,2M, 0,4M, 0,6M, 0,8M și 1,0M, șase pahare de sticlă de 250mL, sfoară și un balanță electronică.

Laboratorul 1C – Materialele utilizate în realizarea acestui experiment sunt următoarele: șase pahare de sticlă de 250 ml, un cartof, un găuritor, un cuțit, apă distilată, soluții de zaharoză 0,2M, 0,4M, 0,6M, 0,8M și 1,0M, sfoară, o riglă și o balanță electronică.

Laboratorul 1D – Materialele folosite în realizarea acestui experiment sunt următoarele: hârtie milimetrică, creion, o riglă, un calculator și creioane colorate.

Laboratorul 1E – Materialele utilizate în realizarea acestui experiment sunt următoarele: un microscop cu lumină, lamă de microscop, lamă, apă distilată, soluție de NaCl, hârtie, creion și coajă de ceapă.

Procedură:
Laboratorul 1A: Obțineți o bucată de tub de dializă de 30 cm care a fost preînmuiată în apă distilată. Legați bine un capăt. Deschideți celălalt capăt al tubului de dializă și introduceți 15 ml de soluție 15% glucoză/1% amidon. Legați celălalt capăt al pungii, lăsând spațiu pentru expansiune. Înregistrați culoarea soluției în pungă. Testați soluția 15% glucoză/1% amidon pentru prezența glucozei folosind Testape. Umpleți un pahar de 250 ml cu apă distilată și adăugați aproximativ 4 ml de soluție Lugol (IKI) în apa distilată. Testați această soluție pentru prezența glucozei și cu Testape. Înregistrați rezultatele în tabelul de date. Scufundați punga în paharul de soluție. Lăsați acest lucru să stea aproximativ 30 de minute sau până când se observă o colorare distinctă. Înregistrați culorile finale ale soluțiilor în pungă și în pahar. Testați ambele soluții încă o dată pentru prezența glucozei cu benzile Testape.

Laboratorul 1B: Înainte de a începe acest laborator, spălați-vă mâinile. Obțineți șase benzi de dializă de 30 cm care au fost preînmuiate în apă distilată. Legați bine fiecare capăt. Se toarnă aproximativ 25 ml din fiecare soluție molară de zaharoză în pungile respective (care ar trebui să fie etichetate, dar nu pe tubul în sine). Legați bine celelalte capete cu sfoară, având grijă să scoateți orice bule de aer și lăsând spațiu pentru expansiune. Clătiți fiecare pungă și ștergeți apa. Se cântărește și se înregistrează masa inițială a pungilor de dializă în tabelul de date. Umpleți șase pahare de sticlă de 250 ml 2/3 pline cu apă distilată și etichetați fiecare pahar cu molaritatea de zaharoză a pungii respective. Scufundați fiecare pungă în apă distilată. Lăsați acest lucru să stea timp de treizeci de minute. Scoateți fiecare pungă, ștergeți părțile laterale pentru a elimina soluția suplimentară și cântăriți și înregistrați masa în grame fiecare pungă și determinați diferența de masă și modificarea procentuală a masei. Apoi, comparați procentele grupului cu clasa.

Laboratorul 1C: Turnați 100 ml din soluțiile de zaharoză alocate în paharele lor de 250 ml (pre-etichetate). Obțineți un cartof mare. Folosind un perforator, scoateți 24 de mostre din cartof și măsurați fiecare în centimetri, astfel încât să fie toate egale în lungime (folosește cuțitul pentru a tăia capetele). Asigurați-vă că nu lăsați nicio piele cu mostrele. Puneți aceste miezuri într-un pahar acoperit până când se poate obține o balanță electronică. Determinați masa a patru miezuri o dată, plasându-le pe cele patru în soluțiile lor de zaharoză. Înregistrați aceste date pentru fiecare dintre cele șase pahare. Lăsați aceste mostre de cartofi să stea scufundate în soluții peste noapte, acoperite. Scoateți miezurile, ștergeți excesul de soluție și cântăriți probele, înregistrând masa în tabelul de date. Determinați diferența de masă, modificarea procentuală a masei și modificarea procentuală medie a clasei în masă. Reprezentați grafic creșterea și scăderea în masă a miezurilor de cartofi în funcție de molaritatea soluțiilor în care au fost plasați în graficul 1.2.

Laboratorul 1D: Folosind hârtie, un creion și un calculator, se determină potențialul de dizolvat al soluției de zaharoză, potențialul de presiune și potențialul de apă. De asemenea, obțineți hârtie milimetrică și reprezentați grafic valorile date pentru modificarea procentuală de dovlecel în masa și molaritatea soluțiilor de zaharoză în graficul 1.3.

Laboratorul 1E: Pregătiți o lamă umedă de coajă de ceapă. Observați la microscop cu lumină și schițați ceea ce vedeți. Adăugați câteva picături de soluție de NaCl, observați și schițați și ceea ce vedeți acolo.

Date:
Tabelul 1.1 Prezența glucozei în soluțiile de pahar și pungi


10.3: Întrebări pre-laborator - Biologie

Mulți studenți care abia încep educația științifică ar putea să nu fie familiarizați cu conceptul de rezumat dintr-un raport de laborator, acesta nu este adesea necesar la cursurile introductive de știință din cauza nivelului său de dificultate. Pe măsură ce urmează cursuri de nivel superior, profesorul va specifica dacă dorește ca un rezumat să fie inclus în rapoartele scrise. Dacă este necesar, este prima parte a raportului dvs., care urmează direct pagina de titlu și continuând introducerea.

Rezumatul, deși este primul din punct de vedere logistic, trebuie întotdeauna scris ultimul. Trebuie scris ultimul, deoarece este esența raportului dvs., care atrage informații din toate celelalte secțiuni ale raportului. Se explică de ce a fost efectuat experimentul și ce concluzii s-au tras din rezultatele obținute. Un ghid general pentru un rezumat are cinci secțiuni sau domenii de interes: de ce a fost efectuat experimentul problema fiind abordată ce metode au fost folosite pentru a rezolva problema rezultatele majore obținute și concluziile generale ale experimentului în ansamblu. Nu vă lăsați, totuși, induși în eroare din această listă pentru a crede că rezumatul este o secțiune lungă. De fapt, ar trebui să fie semnificativ mai scurt decât toate celelalte. Toate aceste informații ar trebui rezumate într-un mod clar, dar succint, dacă rezumatul va avea succes. O lungime medie estimată pentru toate aceste informații este doar un singur paragraf. Deși poate părea că este o lungime scurtă pentru a conține toate informațiile necesare, este necesar pentru că te obligă să fii precis și totuși compact, două calități esențiale.

Cel mai bun mod de a încerca să scrieți un rezumat este să îl împărțiți în secțiunile menționate mai sus. Primele două secțiuni sunt foarte asemănătoare și pot fi grupate împreună, dar nu trebuie să fie. Dacă decideți să le abordați separat, asigurați-vă că nu repetați nimic. Adesea, o secțiune poate fi menționată într-o singură propoziție. Amintiți-vă, concizia este cheia unui rezumat de succes. Fiecare secțiune este abordată mai jos pentru a clarifica ceea ce trebuie inclus și ce poate fi omis.

Cel mai important lucru de reținut atunci când scrieți rezumatul este să fiți scurt și să spuneți doar ceea ce este pertinent. Nu trebuie incluse informații străine. Un rezumat de succes este compact, precis și autonom. De asemenea, trebuie să fie suficient de clar pentru ca cineva care nu este familiarizat cu experimentul dvs. să poată înțelege de ce ați făcut ceea ce ați făcut și ce a indicat experimentul în final. O notă suplimentară este că rezumatele sunt scrise de obicei cu voce pasivă, dar este acceptabil să folosiți pronume personale precum I sau we.

Întrebări generale care trebuie abordate în secțiunea de rezumate

1. De ce a fost făcut și care este problema abordată?
Aceste două secțiuni pot fi grupate într-o singură declarație scurtă care rezumă de ce a fost efectuat experimentul în primul rând? Care a fost întrebarea la care încerca să i se răspundă? Știința este o explorare a adevărului. Totul este despre curiozitate și răspuns la întrebări pentru a afla de ce și cum funcționează lucrurile. Metoda științifică este un exemplu clar al acestei stări prima o problemă sau întrebare și apoi încercați să determinați răspunsul. Această secțiune este enunțul problemei inițiale. Acesta este motivul pentru care se face un experiment. Aceasta nu ar trebui să includă multe detalii, mai degrabă ar trebui să fie o simplă afirmație. Poate fi enunțat chiar și în cel mult una sau două propoziții.

2. Ce ai făcut?
Această parte a rezumatului precizează ce sa făcut pentru a încerca să răspundă la întrebarea propusă. Nu ar trebui să fie în niciun caz foarte detaliat. Conține o scurtă descriere a ceea ce sa făcut, evidențiind doar pașii cruciali. Este secțiunea materiale și metode a rezumatului dvs., dar are o lungime de doar una sau două propoziții. Este o descriere a modului în care ați decis să abordați problema.

3. Ce ai aflat?
Cu alte cuvinte, ce ți-au spus toată munca și pregătirea ta grea despre întrebarea la care ți-ai propus să răspunzi. Acesta conține doar rezultatele cruciale obținute. Rezultatele cruciale sunt cele care sunt necesare pentru a răspunde la întrebarea dumneavoastră inițială. Fără aceste rezultate, experimentul ar fi fost inutil. Rezultatele trebuie prezentate pe scurt și nu trebuie explicate, ci trebuie doar menționate. Este foarte asemănător cu secțiunea cu rezultate a lucrării dvs., dar evidențiază doar rezultatele pertinente folosite pentru a trage concluzii. O lungime medie pentru această secțiune este de cel mult două sau trei propoziții. Acest număr poate varia, totuși, în funcție de complexitatea experimentului, așa că aceste ghiduri de lungime sunt doar atât, ghiduri, nu reguli.

4. Concluzii?
Acesta este sfârșitul rezumatului dvs., care depinde direct de rezultatele obținute. Aceasta este partea „deci ce” a experimentului dvs. „Deci ce” se referă la ceea ce înseamnă rezultatele pe termen lung. Nu trebuie să includeți cum ați tras concluziile, ci doar concluzia finală. Aceasta ar trebui să urmeze direct rezultatele, astfel încât cititorul să știe ce rezultate au condus la ce concluzii. Acesta este echivalentul cu partea de discuție a lucrării, dar din nou, ca și restul rezumatului, trebuie menționat pe scurt și succint. Nu trebuie să explici cum ai dedus concluzia din rezultatele obținute, ci doar concluziile finale. După ce ați afirmat acest lucru, rezumatul este complet.

Iată două exemple ale aceluiași rezumat, exemplul unu este un exemplu de rezumat scris prost, în timp ce exemplul doi este un exemplu de rezumat bine scris. Cuvintele cu caractere italice sunt legături către explicații care descriu de ce propozițiile sunt un exemplu bun sau rău de rezumat.

Proba 1: Acest experiment va determina ce va face enzimele eficiente și ce le va face ineficiente. Am testat diferite mostre de enzime într-un spectrofotometru și le-am înregistrat ratele de absorbție. Șase probe au fost plasate în spectrofotometru, dar două nu conțineau nicio enzimă, acestea au acționat ca martori pentru celelalte probe. Cele patru probe rămase au conținut catecolază variind de la 0,5 ml la 1,75 m. A doua jumătate a experimentului a conținut patru eprubete cu o cantitate constantă de catecolază, dar nivelurile pH-ului au variat de la patru la opt. S-a descoperit că, dacă enzima era prezentă în cantități mari, atunci viteza de absorbție era mare, iar dacă nivelul pH-ului varia între 6 și opt, atunci viteza de absorbție era mare. Prin urmare, se poate spune că enzimele funcționează bine la niveluri de pH neutru și în cantități mari.

Proba 2: Acest experiment a fost efectuat pentru a determina factorii care influențează pozitiv ratele de reacție a enzimelor în activitățile celulare, deoarece unele enzime par a fi mai eficiente decât altele. Activitatea enzimei catecolaze a fost măsurată prin viteza sa de absorbție într-un spectrofotometru, folosind lumină cu o lungime de undă de 540 nm. Am comparat ratele de absorbție în probe cu concentrații diferite de enzime și un pH constant de 7 și cu probe cu concentrație constantă de enzime și niveluri de pH diferite. Probele cu cea mai mare concentrație de enzime au avut cea mai mare rată de absorbție de 95 la sută în comparație cu proba cu cea mai mică concentrație și o rată de absorbție de 24 la sută. Acest lucru sugerează că o concentrație mai mare de enzime duce la o rată mai mare de producție a produsului. Probele cu un pH între șase și opt au avut cea mai mare rată de absorbție de 70 la sută în comparație cu o rată de absorbție de 15 la sută cu un pH de 4, ceea ce sugerează că catecolaza este cea mai eficientă într-un pH neutru cuprins între șase și opt.

Explicații ale exemplelor de legături

Ineficientă: această propoziție este la timpul prezent și trebuie schimbată la timpul trecut. Pe lângă problemele tensionate, propoziția nu spune prea multe cititorului despre ce se înțelege prin termenul eficient. Ce este exact o enzimă eficientă? Autorul trebuie să fie specific și să încerce să evite termenii generici precum eficient. De asemenea, autorul nu precizează niciodată de ce se desfășoară experimentul. De ce este atât de importantă eficacitatea enzimelor? Ce îl face suficient de important pentru a fi studiat? (reveniți la proba 1)

Rate: Această propoziție se referă la ceea ce sa făcut, dar abia dacă transmite informații. Autorul afirmă că au fost testate diferite mostre de enzime, dar nu menționează nimic despre conținutul probelor. A fost folosită aceeași enzimă în fiecare probă? Ce a fost în fiecare probă și ce a variat în fiecare probă? De asemenea, ce legătură are absorbția cu activitatea enzimatică? Această corelație trebuie explicată cititorului. Un ultim detaliu care ar trebui inclus este lungimea de undă a luminii care a fost folosită în spectrofotometru. A rămas constantă sau a fost și o variabilă? (reveniți la proba 1)

Opt: Acesta este prea lung și detaliat pentru a fi într-un abstract, sună ca și cum ar fi fost extras din secțiunea de metode și materiale a lucrării. Nu este necesar să se precizeze cantitățile de enzimă, nici nivelurile de pH. Numărul de eșantioane testate nu trebuie inclus, fie că sunt doar informații străine care nu sunt esențiale pentru înțelegerea experimentului în ansamblu. Informațiile conținute în această propoziție pot fi extrase și rearanjate pentru a spune că unele probe au avut un pH constant și concentrații variabile de enzime, iar alte probe au avut concentrații constante de enzime și niveluri de pH diferite. Cu controalele și variabilele declarate, puteți trece la rezultatele dvs. (reveniți la proba 1)

Ridicat: este prea general, deși transmite informațiile corecte. La declararea rezultatelor este bine să folosiți numere reale. În loc să spuneți că rata de absorbție a fost mare, specificați cât de mare în comparație cu probele cu rate de absorbție scăzute. (reveniți la proba 1)

Sume: un experiment nu este niciodată final și nici nu este niciodată pozitiv. Evita intotdeauna sa spui ca rezultatele pe care le-ai obtinut sunt corecte sau certe. În schimb, spuneți doar că datele au susținut sau nu ipoteza dvs. (reveniți la proba 1)

Altele : Această propoziție este clară și concisă, spunând cititorului de ce a fost efectuat experimentul. Ea postulează întrebarea de ce unele enzime sunt mai eficiente decât altele și explică faptul că experimentul a fost creat pentru a determina ce cauzează aceste diferențe. (reveniți la proba 2)

540 nm : Această propoziție prezintă enzima specifică studiată și modul în care a fost studiată. Lungimea de undă a luminii utilizată în spectrofotometru a fost, de asemenea, specificată, spunând cititorului că lungimea de undă nu a fost una dintre variabilele manipulate în experiment. (reveniți la proba 2)

Niveluri: Este în regulă să folosiți pronume personale în rezumat și această propoziție folosește eficient „noi”. De asemenea, definește ceea ce s-a făcut fără a intra în detalii. Controalele și variabilele sunt precizate clar și succint, astfel încât cititorul să știe ce factori sunt testați pentru a determina productivitatea enzimelor. (reveniți la proba 2)

Rezumat clar: Aceste două propoziții combină rezultatele cu concluzia. Acest lucru ajută la a face concluziile trase din rezultate foarte clare pentru cititor. Autorul a precizat, de asemenea, cifre concrete în rezultate, astfel încât cititorul să fie conștient de cât de mult s-au schimbat ratele de absorbție în fiecare probă. (reveniți la proba 2)

Toate citările din Pechenik, Jan A. Un scurt ghid pentru a scrie despre biologie. pp. 54-102, Universitatea Tufts: Harper Collins College Publishers. 1993.


Date și rezultate experimentale

Metal folosit _________________________________________

Proba 1 Proba 2
Masa metalului (g)
Temperatura laboratorului ( ° C)
Temperatura laboratorului (K) T
Volumul lui H2 gaz produs (ml)
Volumul lui H2gaz produs (L) V
Presiune în laborator (atm) P


Practică ghidată - Laptele mă îmbolnăvește Activitate pre-laborator

Elevilor li se va oferi lectură și întrebări pre-laborator: Laboratorul Milk Makes Me Sick. Documentul pre-laborator analizează procesul enzimelor care lucrează în sistemul digestiv, în special rolul lactază de a descompune lactoza (zahărul din lapte) în glucoză și galactoză. Elevii sunt încurajați să păstreze notițele de curs ca referință pentru a revizui termenii asociați cu enzimele și reacțiile chimice din corpul uman. Informațiile de fundal vor întări notele de curs care tocmai au fost prezentate și vor oferi detalii despre procedura pentru investigația de laborator de mâine.

Elevii își vor revizui răspunsurile la Activitatea de lectură pre-laborator într-o pereche de parteneri. Odată ce clasa a avut ocazia să-și discute răspunsurile cu partenerul, fiecare pereche va alege un purtător de cuvânt pentru a împărtăși unul dintre răspunsurile lor într-o activitate de tip floricele care se rotește în jurul camerei pentru a revizui răspunsurile corecte la întrebările dinaintea laboratorului.

Profesorul va trece în revistă întrebările la articol pe care elevii le identifică ca fiind dificile într-o discuție în grup pentru a se asigura că toți elevii au avut ocazia să înregistreze răspunsurile corecte în pregătirea experimentului de laborator în lecția următoare.

Exemplu de lucru al elevilor - Activitate pre-laborator- După revizuirea lucrărilor elevilor, a fost evident că studenții au reușit să completeze întrebările care corespundeau cu afirmațiile exacte din lectura pre-laborator, dar s-au luptat cu transferul informațiilor în modele. Această analiză revelatoare a dus la o revizuire mai detaliată a clasei pe măsură ce testul unitar se apropie.


Legea Ratei

În cele mai multe cazuri, viteza de reacție depinde de concentrația diferiților reactanți la momentul t. De exemplu, într-o concentrație mai mare a tuturor reactanților, reactanții se ciocnesc mai frecvent și au ca rezultat o reacție mai rapidă. Relația dintre viteza de reacție ν(t) și concentrații este definită ca legea ratei. Și legea vitezei pentru reacția chimică generală aA + bB ---------------> cC + dD este:

Unde k este constanta vitezei, iar puterea x și y este Ordin a reacției față de reactanții A și B. Legea vitezei trebuie determinată experimental și nu poate fi dedusă doar din stoichiometria unei reacții chimice echilibrate.


10.3: Întrebări pre-laborator - Biologie

Nume ___________________________________________ Secțiunea _____

Întrebări pre-laborator - Microscopie

1. Enumerați 3 contribuții ale lui Antony von Leeuwenhoek și 3 contribuții ale lui Robert Hooke la
stiinta biologiei?

2. Descrieți pe scurt, cu propriile cuvinte, cum funcționează un microscop cu contrast de fază? Ce folos are?

3. Descrieți pe scurt, cu propriile cuvinte, cum funcționează un microscop electronic cu transmisie?

4. Descrieți pe scurt, cu propriile cuvinte, cum funcționează un microscop electronic cu scanare?

5. Enumerați funcția următoarelor părți ale microscopului.

Corp "tub" _________________________________________________________

Treapta mecanică ________________________________________________________

Butoane mecanice pentru treapta ________________________________________________

Clip(e) de scenă ________________________________________________________

Piesă pentru nas rotativă _______________________________________________________________

Diafragma irisului _______________________________________________________

Iluminator (sursă de lumină) _____________________________________________

Lentile obiective _________________________________________________________

Buton de ajustare grosieră _______________________________________________

Buton de reglare fină _________________________________________________

6. Ce se înțelege prin mărire totală?

7. Ce se înțelege prin parfocal?

8. Folosind resursele disponibile, găsiți și atașați o microfotografie reprezentativă a unui
specimen biologic luat de Compound Light Microscope, un TEM (electron de transmisie
microscop) și un SEM (microscop electronic cu scanare). Aceasta nu înseamnă o imagine a
microscoape.

10. Enumerați cel puțin trei tipuri diferite de microscoape care sunt folosite de biologi pentru a studia celulele.


10.3 și 10.4 Acțiuni reflexe și creier NOUA specificație GCSE Biology

Buna! Bun venit la magazinul meu. Vă rugăm să luați un moment pentru a naviga. Creez activități distractive și interactive conduse de elevi pentru KS3, GCSE și biologie de nivel A. Ca profesor de liceu, am implementat lucrurile pe care mi le-am dorit întotdeauna în lecțiile mele, în resursele mele. Adică, resurse captivante, de înaltă calitate, care au un impact cu adevărat asupra învățării. Și acest lucru trebuie făcut cu cât mai puțină agitație - eficiența este primordială. De aceea, veți găsi toate resursele mele de lecție într-un singur fișier, gata de plecare!

Imparte asta

Conținutul este pentru NOUA specificație AQA GCSE Biology.
Planul de lecție de biologie GCSE/prezentarea PowerPoint conține toate activitățile și resursele (într-un singur fișier!) pentru atingerea următoarelor obiective de învățare:

1) Ce sunt reflexele - starter patru poze un cuvânt activitate de sortare voluntară sau involuntară

2) Cum funcționează reflexele - fișă practică cu metoda și tabelul de rezultate link video cu întrebări la care să răspunzi din videoclip sarcină de scriere extinsă potriviți partea corpului implicată într-o acțiune reflexă cu funcția lor puneți ordinea părților unei acțiuni reflexe

3) De ce reflexele sunt importante în corpul tău - video și sarcină extinsă de scriere ca mai sus

4) Ce fac principalele zone ale creierului - codificarea culorilor și adnotarea regiunilor creierului cu funcțiile lor coordonare și învățare fișă de planificare practică și fișă de analiză plenară: potriviți partea creierului cu ceea ce este responsabil

5) Cum află oamenii de știință despre structura și funcțiile creierului - link video de pornire întrebări practice fișa de analiză

6) Cum funcționează știința - Instrucțiuni practice, fișă de planificare și fișă de analiză cu tabel de completat (tipărește diapozitivele A4 pentru redactarea practică), grafic pentru a reprezenta rezultatele și întrebări ulterioare.

Toate activitățile sunt complete cu răspunsuri complet integrate în PowerPoint pentru evaluarea de către colegi/autoevaluare.

Obțineți această resursă ca parte a unui pachet și economisiți până la 22%

Un pachet este un pachet de resurse grupate pentru a preda un anumit subiect sau o serie de lecții într-un singur loc.

Homeostazia: principiile homeostaziei, structura și funcția sistemului nervos, acțiunile reflexe, creierul, ochiul și problemele comune ale ochiului

Un complet de șase lecții despre homeostazie create pentru NOUA specificație GCSE Biology. Lecțiile au inclus: 10.1 Principiile homeostaziei 10.2 Structura și funcția sistemului nervos 10.3 Acțiuni reflexe 10.4 Creierul 10.5 Ochiul 10.6 Probleme frecvente cu ochiul


Leaf Disk Pre-Lab

Vă rugăm să urmați linkul de mai jos pentru a vedea un videoclip al experimentului pe care îl vom realiza în clasă:

Laboratorul de fotosinteză a discului cu frunze plutitoare

Adaptat după Leaf Disk Lab al lui Brad Williamson (http://www.elbiology.com/labtools/Leafdisk.html)

Introducere Lumina este o parte a unui continuum de radiații sau unde de energie. Lungimi de undă mai scurte de energie au cantități mai mari de energie. For example, high-energy ultraviolet rays, with wavelengths of approximately 1 nanometer (nm) to 380 nm, can harm living tissues due to the large amount of energy they carry. Wavelengths of light within the visible part of the light spectrum power fotosinteză. The visible light spectrum is from about 400 to 750 nm (1 billionth of a meter). Only visible light, with its intermediate wavelengths, has enough energy to cause chemical change without destroying biological molecules. The short, high frequency waves of gamma rays (10-5 nm) have too much energy and break the hydrogen bonds found within biological molecules such as proteins and nucleic acids like DNA. The longer waves of heat, microwaves and radio waves (103 nm to 103 meters) do not possess enough energy and are absorbed by the water molecules in a plant.

When visible light is absorbed by leaf pigments, such as chlorophyll a or b, during the light reactions of fotosinteză, electrons within each photosystem are boosted to a higher energy level and replaced by the splitting of H2O molecules. O2 gas is released as a byproduct of splitting water. The energy contained in the excited electrons is then used to produce ATP and NADPH, two high-energy molecules. The energy stored in the bonds of these high-energy molecules is then used to break apart and recombine carbon dioxide (CO2) into organic carbon molecules (i.e. glucose) in the light-independent reactions. Plants can then either break down the glucose immediately to release the captured energy in a process called respiraţie, or can store the glucose molecules as starch and cellulose for later use.

Leaf disks float, normally. When the air spaces are infiltrated with a solution of water, the overall density of the leaf disk increases and the disk sinks. The infiltration solution includes a small amount of sodium bicarbonate (NaHCO3) thus enabling the bicarbonate ion to serve as the carbon source for photosynthesis. As photosynthesis proceeds, oxygen is released into the interior of the leaf, which changes its buoyancy causing the disks to rise. Since cellular respiration is taking place at the same time within the leaf, consuming some of the oxygen and glucose generated by photosynthesis, the rate that the disks rise is an indirect measurement of the net rate of photosynthesis. In this lab, you will measure the net rate of photosynthesis for several plants under both light and dark conditions.

On your blog, answer the following PRELAB questions:

1. Why is baking soda added to the water for this experiment? For what purpose is it used in this experiment?
It is added to facilitate photosynthesis. It is also used to increase the density of the leaf disk.

2.What causes the leaf disks to float to begin with, and why do we need to use a syringe to make them sink?
Air spaces causes the leaf disks to float. Since the water weighs down the leaves, syringe is needed.

3. What causes the leaf disks to rise? What process are we taking advantage of, and how?
As leaves create oxygen through photosynthesis, leaves rise. Since photosynthesis creates oxygen, it lowers the density of leaves.

4. If the leaf disks rise more quickly, what does that tell you about the rate of photosynthesis? De ce?
It means the rate of photosynthesis was quicker because there is more oxygen, which means the process was quicker.

5. Why do the leaf disks sink when they are put in a dark environment? Explica.
It sinks because the leaf disks cannot do photosynthesis. Since it can’t process photosynthesis, oxygen cannot be created.

6. If we were to use three differently colored light filters (1) Dark blue = 425nm, 2) Green = 550nm, 3) Orange = 675nm light only), which wavelength of light would cause the leaves to rise the fastest in 5 minutes? Which would cause the leaves to rise the slowest? Use the graph below to justify your response.
Dark blue would be the fastest because it lets the most amount of energy into the leaf. Then it is orange and green. This is because their amount of light energy decreases. Green light will be reflected off because the plant itself is green.

BONUS QUESTION: If both photosynthesis and cellular respiration are occurring at the same time, why can we determine that the leaves float primarily due to the production of O2 gas, and not CO2 gas bubbles?


Biology Lab Questions

Safety glasses or safety goggles should always be worn inside a chemistry lab to protect your eyes.

2. Should you add acid to water or water to acid?

3. Where should you dispose of broken glass?

They should be placed in the proper container for the disposal of sharps. They should never be tossed into a regular trash can.

4. What should you do if you spill a chemical on your hand?

You should immediately wash your hands with copious amounts of water and antibacterial soap.

Exercise 1: What Is It?

A chemical laboratory contains special equipment to use while you are performing an experiment. Locate each of the items pictured on the following pages in your lab kit, and place a check mark in the appropriate place when you find it. After you have completed this, sketch a picture and name any additional items that are located in your lab kit, classroom, or home that are likely to be useful for you in completing these labs.

50 mL ____x_____

Stir Stick__x_______

250 mL ___x______ Graduated Cylinder

Test Tube ___x______ Pipette ___x______ Petri Dish ___x______

Include your Drawings Here:

Experiment 1: Neutralization of Acids and Bases

In this experiment, you will learn how to properly neutralize and dispose of acidic and basic solutions.

Materiale5 mL 4.5% Acetic Acid (vinegar), C2H4O2 (1) 10 mL Graduated Cylinder 8 Litmus Test Strips (Neutral) Permanent Marker 2 Pipettes 1 g Sodium Bicarbonate (baking soda), NaHCO3 4 Weigh Boats *Water*You Must Provide

1. Use the permanent marker to label three of the weigh boats as A – C.

2. Measure and pour approximately 5 mL of water into weigh boat “A”.

3. Add 0.5 g sodium bicarbonate to weigh boat “B”.

4. Measure and pour approximately 5 mL of water into weigh boat “B”. Gently pipette the solution up and down until the sodium bicarbonate is fully dissolved in the water.

5. Measure and pour 5 mL acetic acid solution to weigh boat “C”.

6. Use the litmus test strips to determine if the substances in weigh boats A – C are acidic or basic. This is accomplished by briefly dipping an unused strip of the litmus paper in each of the weigh boats. Record your color results in Table 2.

7. Pipette 1 mL of the sodium bicarbonate solution from weigh boat “B” into weigh boat “C”. Gently swirl weigh boat “C” to mix.

8. Develop and record a hypothesis regarding the pH of weigh boat “C”. Record this in the Post-Lab Questions section.

9. Test the pH of weigh boat “C” using new litmus paper. Record your result in Table 3.

10. Repeat Step 9 four more times until all the sodium bicarbonate has been added to weigh boat “C”.

Table 2: Initial Litmus Test Results
Weigh BoatChemical ContentsLitmus ResultsAdditional Observations
A
B
C
Table 3: Neutralization of an Acid
Amount of BaseLitmus Result
1 mL
2 mL
3 mL
4 mL
5 mL

Post-Lab Questions

1. State your hypothesis (developed in Step 8) here. Be sure to include what you think the pH will be, and why.

2. What is a neutralization reaction?

3. When might neutralization reactions be used in a laboratory setting?

4. At what point was the acetic acid in weigh boat “C” neutralized?

5. What do you think would have been the results if a stronger solution of sodium bicarbonate was used? Would it take more or less to neutralize the acid? What about a weaker concentration of sodium bicarbonate?

Pre-lab Questions

1. List the atomic numbers for each of the following elements.

Fier_________Oxigen_________
Calciu_________Azot_________
Potasiu_________Hidrogen_________

2. What determines if a bond is polar?

3. Use the periodic table to determine if potassium chloride (KCl) formed through covalent or ionic bonds? Use evidence from the Introduction to support your answer.

4. Research two common, polar molecules and two common nonpolar molecules. Draw their molecular structure and explain how the structure makes each molecule polar or non-polar.

Experiment 1: Slime Time

Inks can be polar or non-polar. Polar solvents pick up polar inks, while non-polar solvents pick up non-polar inks. In this experiment, you will use inks to identify slime and silly putty as polar or non-polar. You will also use paper chromatography to verify the inks are correctly identified as polar or non-polar.

Materiale(1) 250 mL Beaker 5 mL 4% Borax Solution, Na2B4O7·10H2O Dry Erase Marker (1) 10 mL Graduated Cylinder (1) 100 mL Graduated Cylinder Filter Paper (Disk) Filter Paper (Square) 0.5 g Guar Gum Highlighter Permanent Marker 1 Popsicle StickSilly Putty® Ruler Wooden Stir Stick Uni-ball® Roller Pen *Distilled or Tap Water *Newspaper *Notebook Paper *Scissors *You Must Provide

Part 1: Making Slime

1. Weigh out 0.5 g of guar gum into a 250 mL beaker.

2. Measure 50.0 mL of distilled water into a 100 mL graduated cylinder and pour it into the 250 mL beaker that contains the guar gum.

3. Rapidly stir the mixture with a wooden stir stick for three minutes, or until the guar gum is dissolved.

4. Measure 4.00 mL of a 4% Borax solution into a 10 mL graduated cylinder and add it to the guar gum and water.

5. Stir the solution until it becomes slime. This will take a few minutes. If the slime remains too runny, add an additional 1.0 mL of the 4.0% Borax solution and continue to stir until the slime is the slightly runny or gooey.

6. Once you are satisfied with the slime, pour it into your hands. Be sure not to drop any of it on to the floor.

7. Manipulate the slime in your hands. Write down observations made about how slime pours, stretches, breaks, etc. in Part 1 of the Data section. CAUTION: Slime is slippery and if dropped it can make the work area slick.

8. Place the slime back into the beaker and WASH YOUR HANDS.

Part 2: Slime and Putty Ink Tests

1. On a piece of notebook paper make one 20 – 25 mm long mark of each of the inks you are testing (permanent marker, highlighter, Dry Erase, and Uni-ball® Roller Pen). Space the marks at least one inch apart. Use a pencil to label each mark with its description.

A. Water soluble inks include those in highlighters and certain pens.

b. Water insoluble inks include those in a permanent pen/markers, newsprint, and a dry-erase markers.

2. While the inks are drying, select a passage or a picture in the newspaper to test with the slime.

3. Develop a hypothesis stating whether or not you believe the slime produced in Part 1 will pick up newsprint ink. Record this hypothesis in the Post-Lab Questions section. Then, break off a small piece of slime that is 3 – 5 cm in diameter. Gently place this piece on top of the newspaper print, then carefully pick it up again.

4. Observe and record in Table 1 whether or not the ink was picked up onto the slime.

5. Break off another small piece of slime. Once the inks from Step 1 have dried gently place the slime on top of the first spot on the notebook paper, then carefully pick it up. Repeat this for each of the inks. Observe and record which inks were picked up (dissolved) by the slime in Table 1.

6. Repeat this ink testing two more times for accuracy.

7. Hypothesize which inks the silly putty will pick up in the Part 2 of the Data section. Then, perform the ink tests with the Silly Putty® according to the procedure outlined in Steps 5 – 6.

Part 3: Chromatography of Ink Samples

Figura 7:Chromatography apparatus for Procedure Part 3.

1. Use a pencil or scissors to poke a mic hole in the center of a piece of filter paper (see Figure 7).

2. Spot the filter paper evenly spaced approximately 2 cm from the small hole with the two insoluble inks and the two soluble inks that were used in Part 2, Step 1.

3. Obtain a ½ piece of filter paper. Fold the paper in half several times so that it makes a narrow wick.

4. Insert the wick into the hole of the spotted paper so that it is above the top of the filter paper by approximately 2 cm.

5. Fill a 250 mL beaker ¾ full with water.

6. Set the filter paper on top of the beaker so that the bottom of the wick is in the water. The paper should hang over the edge of the beaker with the spotted side up.

7. Allow water to travel until it is approximately 1 cm from the edge of the filter paper. Remove the filter paper from the beaker.

8. Observe which inks moved from where they were originally spotted. Record your observations in Part 3 of the Data section.

Table 1: Results of Ink Testing for Silly Putty®
Name of InkPicked up (dissolved)Did not pick up
Trial 1Trial 2Trial 3Trial 1Trial 2Trial 3
Newsprint
Highlighter
Uni-ball® Roller Pen
Marker permanent
Dry Erase Marker

· Hypothesis for Silly Putty® (Procedure Part 2, Step 7):

· Observations of inks following chromatography:

Post-Lab Questions

1. Record your hypothesis regarding the slime’s ability to pick up newsprint ink here.

2. Did the slime pick up water soluble or water insoluble inks? From these results, what can you conclude about the polarity of slime molecules?

3. Explain how you determined your hypothesis about whether or not silly putty would pick up water soluble inks. Was your hypothesis correct?

4. Were the inks you used properly classified as soluble and insoluble? Explică-ți răspunsul.

Pre-Lab Questions

1. Nitrogen fixation is a natural process by which inert or unreactive forms of nitrogen are transformed into usable nitrogen. Why is this process important to life?

2. Given what you have learned about the hydrogen bonding shared between nucleic acids in DNA, which pair is more stable under increasing heat: adenine and thymine, or cytosine and guanine? Explică de ce.

3. Which of the following is not an organic molecule methane (CH4), fructose (C6H12O6), rosane (C20H36), or ammonia (NH3)? De unde știți?

Experiment 1: Testing for Proteins

The protein molecules in many foods provide the amino acid building blocks required by our own cells to produce new proteins. To determine whether a sample contains protein, a reagent called Biuret solution is used. Biuret solution contains copper ions. However, the chemical state of the copper ions in Biuret solution causes them to form a chemical complex with the peptide bonds between amino acids (when present), changing the color of the solution. Biuret solution is normally blue, but changes to pink when short peptides are present and to violet when long polypeptides are present.

Figura 6:Biuret solution only is located on the far left side of the image (blue). Note the transition from blue to violet as proteins are added to the solution, causing the solution to transition from blue to violet.
Materiale(2) 250 mL Beakers 25 Drops Biuret Solution, H2NC(O)NHC(O)NH (1) Knox® Gelatin Packet 5 mL 1% Glucose Solution, C6H12O6 (1) 10 mL Graduated Cylinder (1) 100 mL Graduated Cylinder Permanent Marker 5 Pipettes5 Test Tubes (Plastic) Test Tube Rack 5 mL Unknown Solution *Tap Water *Hot Water *Egg White *You Must Provide

1. Label five test tubes 1, 2, 3, 4 and 5.

2. Prepare your testing samples as follows:

A. Mix one egg white with 25 mL water in a 250 mL beaker to create an albumin solution. Pipette 5 mL of this solution into Test Tube 1.

b. Mix the packet of Knox® gelatin with 50 mL hot water in a second 250 mL beaker. Stir until dissolved. Pipette 5 mL of this solution into Test Tube 2.

3. Pipette 5 mL of the 1% glucose solution into Test Tube 3.

4. Use the 10 mL graduated cylinder to measure and pour 5 mL of water into Test Tube 4.

5. Pipette 5 mL of the “Unknown Solution” into Test Tube 5.

6. Record the initial color of each sample in Table 1.

7. Develop a hypothesis regarding what you predict will happen when Biuret solution is added to Tubes 1 – 4. Record your hypothesis in the Post-Lab Question section. Then, pipette five drops of Biuret solution to each test tube (1 – 5). Swirl each tube to mix.

8. Record the final color in Table 1. Note: Protein is present in the sample if a light purple color is observed.

Table 1: Testing for Proteins Results
ProbăCuloare inițialăCuloare finalăProtein Present
1 – Albumin Solution
2 – Gelatin Solution
3 – Glucose
4 – Water
5 – Unknown

Post-Lab Questions

1. Record your hypothesis about what will happen when Biuret solution is mixed with the solutions from test tubes 1, 2, 3, and 4 here. Be sure to use scientific reasoning to support your hypothesis.

2. Write a statement to explain the molecular composition of the unknown solution based on the results obtained during testing with each reagent.

3. Diet and nutrition are closely linked to the study of biomolecules. How should you monitor your food intake to insure the cells in your body have the materials necessary to function?

4. The molecule pictured below produced a blue color when tested with Benedict’s reagent, a yellow color when tested with IKI, and a violet color when tested with Biuret reagent. Based on the structure shown below and these chemical results, what kind of biomolecule is this?

Pre-Lab Questions

1. A concentration gradient affects the direction that solutes diffuse. Describe how molecules move with respect to the concentration.

2. How does the size of a solute affect the rate of diffusion? Consider the size and shape of a molecule in your response.

3. Does polarity affect diffusion? Explain your answer using scientific principles.

Experiment 1: Diffusion through a Liquid

In this experiment, you will observe the effect that different molecular weights have on the ability of dye to travel through a viscous medium.

Materiale1 60 mL Corn Syrup Bottle, C12H22O11 Red and Blue Dye Solutions (Blue molecular weight = 793 g/mole Red molecular weight = 496 g/mole) (1) 9 cm Petri Dish (top & bottom halves)Ruler *Stopwatch *Tape *You Must Provide

1. Use clear tape to secure one half (either the bottom or the top half is fine) of the petri dish over a ruler. Make sure that you can read the measurement markings on the ruler through the petri dish. The dish should be positioned with the open end of the dish facing upwards.

2. Carefully fill the half of the petri dish with corn syrup until the entire surface is covered.

3. Develop a hypothesis discussing which dye you believe will diffuse faster across the corn syrup and why. Record this in the Post-Lab Questions section. Then, place a single drop of blue dye in the middle of the corn syrup. Note the position where the dye fell by reading the location of the outside edge of the dye on ruler.

4. Record the location outside edge of the dye (the distance it has traveled) every ten seconds for a total of two minutes. Record your data in Tables 1 and 2.

5. Repeat Steps 1 – 4 using the red dye, the second half of the petri dish, and fresh corn syrup.

Table 1: Rate of Diffusion in Corn Syrup
Time (sec)Blue DyeRed DyeTime (sec)Blue DyeRed Dye
10 70
20 80
30 90
40 100
50 110
60 120
Table 2: Speed of Diffusion of Different Molecular Weight Dyes
StructuraGreutate molecularăTotal Distance Traveled (mm)Speed of Diffusion (mm/hr)*
Blue Dye
Red Dye

*Multiply the total distance diffused by 30 to get the hourly diffusion rate

Post-Lab Questions

1. Record your hypothesis from Step 3 here. Be sure to validate your predictions with scientific reasoning.

2. Which dye diffused the fastest?

3. Does the rate of diffusion correspond with the molecular weight of the dye?

4. Does the rate of diffusion change over time? De ce sau de ce nu?

5. Examine the graph below. Does it match the data you recorded in Table 2? Explain why, or why not. Submit your own plot if necessary.

Experiment 2: Concentration Gradients and Membrane Permeability

In this experiment, you will dialyze a solution of glucose and starch to observe:

· The directional movement of glucose and starch.

· The effect of a selectively permeable membrane on the diffusion of these molecules.

An indicator is a substance that changes color when in the presence of the substance it indicates. In this experiment, IKI will be used an indicator to test for the presence of starch and glucose.

Materiale(5) 100 mL Beakers 10 mL 1% Glucose Solution, C6H12O6 4 Glucose Test Strips (1) 100 mL Graduated Cylinder 4 mL 1% Iodine-Potassium Iodide, IKI 5 mL Liquid Starch, C6H10O5 3 Pipettes 4 Rubber Bands (Small contain latex, handle with gloves on if allergic)*Stopwatch *Water *Scissors *15.0 cm Dialysis Tubing *You Must Provide *Be sure to measure and cut only the length you need for this experiment. Reserve the remainder for later experiments.
Atenţie!Do not allow the open end of the dialysis tubing to fall into the beaker. If it does, remove the tube and rinse thoroughly with water before refilling with a starch/glucose solution and replacing it in the beaker.
Notă:· Dialysis tubing can be rinsed and used again if you make a mistake.· Dialysis tubing must be soaked in water before you will be able to open it up to create the dialysis “bag”. Follow the directions for the experiment, beginning with soaking the tubing in a beaker of water. Then, place the dialysis tubing between your thumb and forefinger and rub the two digits together in a shearing manner. This should open up the “tube” so you can fill it with the different solutions.

1. Measure and pour 50 mL of water into a 100 mL beaker. Cut a piece of dialysis tubing 15.0 cm long. Submerge the dialysis tubing in the water for at least 10 minutes.

2. Measure and pour 82 mL water into a second 100 mL beaker. This is the beaker you will put the filled dialysis bag into in Step 9.

3. While the dialysis bag is still soaking, make the glucose/sucrose mixture. Use a graduated pipette to add five mL of glucose solution to a third beaker and label it “Dialysis bag solution”. Use a different graduated pipette to add five mL of starch solution to the same beaker. Mix by pipetting the solution up and down the pipette six times.

4. Using the same pipette that you used to mix the dialysis bag solution, remove two mL of that solution and place it in a clean beaker. This sample will serve as your positive control for glucose and starch.

A. Dip one of the glucose test strips into the two mL of glucose/starch solution in the third beaker. After one minute has passed, record the final color of the glucose test strip in Table 3. This is your positive control for glucose.

b. Use a pipette to transfer approximately 0.5 mL of IKI to into the two mL of glucose/starch solution in the third beaker. After one minute has passed, record the final color of the glucose/starch solution in the beaker in Table 3. This is your positive control for starch.

5. Using a clean pipette, remove two mL of water from the 82 mL of water you placed in a beaker in Step 2 and place it in a clean beaker. This sample will serve as your negative control for glucose and starch.

A. Dip one of the glucose test strips into the two mL of water in the beaker. After one minute has passed, record the final color of the glucose test strip in Table 3. This is your negative control for glucose.

b. Use a pipette to transfer approximately 0.5 mL of IKI to into the two mL of water in the beaker. After one minute has passed, record the final color of the water in the beaker in Table 3. This is your negative control for starch.

Note: The color results of these controls determine the indicator reagent key. You must use these results to interpret the rest of your results.

6. After at least 10 minutes have passed, remove the dialysis tube and close one end by folding over 3.0 cm of one end (bottom). Fold it again and secure with a rubber band (use two rubber bands if necessary).

7. Make sure the closed end will not allow a solution to leak out. You can test this by drying off the outside of the dialysis bag with a cloth or paper towel, adding a small amount of water to the bag, and examining the rubber band seal for leakage. Be sure to remove the water from the inside of the bag before continuing.

8. Using the same pipette which was used to mix the solution in Step 3, transfer eight mL of the solution from the Dialysis Bag Solution beaker to the prepared dialysis bag.

Figura 4:Step 9 reference.

9. Place the filled dialysis tube in beaker filled with 80 mL of water with the open end draped over the edge of the beaker as shown in Figure 4.

10. Allow the solution to sit for 60 minutes. Clean and dry all materials except the beaker with the dialysis bag.

11. After the solution has diffused for 60 minutes, remove the dialysis tube from the beaker and empty the contents into a clean, dry beaker. Label it dialysis bag solution.

12. Test the dialysis bag solution for the presence of glucose and starch. Test for the presence of glucose by dipping one glucose test strip into the dialysis bag directly. Again, wait one minute before reading the results of the test strips. Record your results for the presence of glucose and starch in Table 4. Test for the presence of starch by adding two mL IKI. Record the final color in Table 4 after one minute has passed.

13. Test the solution in the beaker for glucose and starch. Use a pipette to transfer eight mL of the solution in the beaker to a clean beaker. Test for the presence of glucose by dipping one glucose test strip into the beaker. Wait one minute before reading the results of the test strip and record the results in Table 4. Add two mL of IKI to the beaker water and record the final color of the beaker solution in Table 4.

Table 3: Indicator Reagent Data
IndicatorStarch Positive Control (Color)Starch Negative Control (Color)Glucose Positive Control (Color)Glucose Negative Control (Color)
IKI Solution n/an/a
Glucose Test Stripn/an/a
Table 4: Diffusion of Starch and Glucose Over Time
IndicatorDialysis Bag After 1 HourBeaker Water After 1 Hour
IKI Solution
Glucose Test Strip

Post-Lab Questions

1. Why is it necessary to have positive and negative controls in this experiment?

2. Draw a diagram of the experimental set-up. Use arrows to depict the movement of each substance in the dialysis bag and the beaker.

3. Which substance(s) crossed the dialysis membrane? Support your response with data-based evidence.

4. Which molecules remained inside of the dialysis bag?

5. Did all of the molecules diffuse out of the bag into the beaker? De ce sau de ce nu?


Priveste filmarea: Qu0026A despre Medicina de Laborator. Cum e fara pacienti? (August 2022).